基本原理：
在長期的細胞培養(yǎng)過程中可能會出現(xiàn)微生物污染或基因型改變等情況，會導致具有優(yōu)良特性細胞系的丟失。為防止這些細胞的丟失，細胞可以經(jīng)快速冷凍并幾乎無限期保存在非常低的溫度下，如液氮（-176℃）。
試劑和設(shè)備：
冷凍液: 90%滅活血清 10%DMSO（或甘油），用0.45μm微孔濾膜過濾除菌，4℃保存；
培養(yǎng)液；
臺盼藍溶液（0.4%溶解于PBS）；
70%乙醇；
組織培養(yǎng)瓶；
15-50 ml 無菌圓錐底離心試管；
離心機；
血球計數(shù)板；
超凈工作臺；
光學顯微鏡；
37℃水浴；
冷凍管；
-80℃冰箱；
液氮和液氮容器。
操作步驟：
（一）冷凍細胞
1．收集對數(shù)生長期細胞；
2．以25μl臺盼藍溶液稀釋25μl細胞懸液；用血球計數(shù)板計數(shù)并計算細胞存活率（至少應(yīng)該在90%以上）；
3．細胞懸液在4℃ 條件下200´g離心10分鐘；
4．將沉淀的細胞重新懸浮在冷凍液中（大約5´106細胞/0.5 ml 冷凍液）；
5．將細胞懸液加入到冷凍管中，每管0.5 ml；
6．將冷凍管置于-80℃冰箱中；
7．24小時后，將冷凍管移入液氮罐中；
8．在記錄本或電腦中記錄下每一個冷凍管的位置以確保在以后應(yīng)用時能夠找到每一個冷凍管。
（二）細胞復蘇
1．將冷凍管迅速由液氮轉(zhuǎn)入到37℃水浴中，冷凍管的頂部保持在水面以上以避免任何污染，不定時攪拌加速解凍；
2．當細胞完全解凍后，用含70%乙醇的紗布擦拭冷凍管消毒；
3．將解凍后細胞轉(zhuǎn)移到含4℃預(yù)平衡培養(yǎng)液的試管中；
4．細胞懸液在4℃下200´g離心10分鐘；
5．棄上清，將細胞重新懸浮在新鮮培養(yǎng)液中；
6．將細胞轉(zhuǎn)移到細胞培養(yǎng)瓶，CO2孵箱中培養(yǎng)；
7．是用倒置顯微鏡檢查細胞存活率以及細胞密度，如果細胞密度過高，用培養(yǎng)液稀釋至適宜濃度。
對照試驗
在冷凍細胞被移入到液氮罐中一段時間后，取出一管細胞復蘇并進行培養(yǎng)以檢測存活率。
實驗要點及說明：
1．嚴格遵守液氮操作規(guī)則（即戴上合適的手套和護目鏡），液態(tài)氮對眼睛極為有害；
2．對一瓶細胞培養(yǎng)液要盡可能多分裝幾個冷凍管；
3．延長暴露在DMSO中的時間對細胞有害，因此冷凍和解凍操作要盡可能快；
4．細胞可以暫時穩(wěn)定保存在-80 ℃達數(shù)月；
5．每批次冷凍和復蘇的細胞的存活率可能會不相同，為避免這個問題，每次細胞凍存最好分兩批以上進行；
6．DMSO可以防止在細胞內(nèi)部出現(xiàn)冰結(jié)晶，凍存過程需要逐步降低溫度；
7．如果復蘇后細胞難以恢復到良好狀態(tài)，可以使用含10%鼠胚胎成纖維母細胞培養(yǎng)上清的培養(yǎng)液以促進恢復；
8．也可以用含20%熱滅活胎牛血清和10%DMSO的培養(yǎng)液為冷凍液。